Проблема
|
Причина возникновения
|
Методы предупреждения и решения
|
Большой фон по PLT, WBC, RBC, низкая воспроизводимость HGB.
|
Гидросистема прибора загрязнена белковыми отложениями. Не делали штатную процедуру промывки.
|
Необходимо промыть весь прибор очищающим раствором, а потом дистиллированной водой. Регулярно выполняйте процедуру промывки согласно инструкции по эксплуатации.
|
Бактериальное загрязнение. Отсутствие промежуточной встроенной сливной емкости, сливной шланг погружен во внешнюю емкость слишком глубоко (соприкасается с отходами), сливная емкость давно не менялась.
|
Необходимо промыть весь прибор очищающим раствором, а потом дистиллированной водой.
Не рекомендуется переливать остатки реагентов из старых канистр в новые, т.к. это приводит к бактериальному загрязнению гидравлики прибора и, как правило, к увеличению фона.
|
Некачественные реагенты
|
Необходимо использовать реагенты, сертифицированные под данный прибор.
|
Большой фон по PLT, не отмывается.
|
Отсутствие или плохое заземление, помехи по сети.
|
Необходимо заземлить или «занулить» прибор, использовать источник бесперебойного питания «On Line».
При эксплуатации гематологических анализаторов важную роль играет качество электрической сети и заземления. Внезапное отключение электропитания часто приводит к сбоям в работе приборов и необходимости вмешательства инженеров сервисной службы. В том случае, если электрическое питание пропадает в момент забора пробы или анализа, и появляется спустя несколько часов (5 – 20), последствия могут оказаться просто плачевными – может выйти из строя гидравлика, засориться сгустками крови капиллярные трубки, апертура и т.д. Поэтому прибор должен работать с источником бесперебойного питания.
|
Некачественные (грязные) реагенты, холодные.
|
Необходимо использовать непросроченные реагенты, хранить их в темном месте, не замораживать, не держать долго открытыми. Перед работой дать прогреться до комнатной температуры.
|
Грязная апертура.
|
Необходимо промыть апертуру ферментативным промывающим раствором.
|
Дефект апертуры (микротрещина), не герметичность с камерой счета.
|
Необходима замена апертуры и/или уплотнительных колец.
|
Систематическое занижение или завышение результатов.
|
Не откалиброван прибор.
|
Периодически необходима калибровка по стандартным материалам, так как электронные и механические компоненты прибора, датчиков, насосов и т.д. со временем подвергаются старению и меняют свои технические параметры. Для осуществления калибровки, необходимо пользоваться только качественными контрольными материалами.
|
Не отрегулирован дилютер (для полуавтоматов).
|
Необходима настройка дилютера с помощью аналитических весов.
|
Занижение результатов, частые засоры.
|
Наличие сгустков в пробах.
|
При выполнении анализа на гематологическом анализаторе предпочтительно использовать венозную кровь. Забор венозной крови лучше осуществлять, применяя специальные одноразовые системы с ЭДТА - «МОНОВЕТ». Это гарантирует отсутствие в образце посторонних примесей, а наличие антикоагулянта в оптимальной концентрации предотвращает образование фибриновых сгустков и агрегацию тромбоцитов.
При заборе капиллярной крови оптимально использовать пробирки сЭДТА – «МИКРОВЕТ». Нанесенный на внутреннюю поверхность пробирки мелкодисперсный порошок ЭДТА быстро растворяется в крови и надежно блокирует процессы свертывания крови и активации тромбоцитов.
При работе с разведенной кровью (режим предилюции) нужно использовать индивидуальные пипетки Сали. Цепочка «Капилляр Панченкова + стекло+ пипетка Сали» приводит к увеличению агрегации тромбоцитов, т.к. увеличивается время пробоподготовки, а также стекло само по себе является катализатором агрегации.
Не следует использовать пробирки с выпаренным раствором ЭДТА. При испарении раствора на дне пробирки образуются крупные кристаллы ЭДТА, которые очень медленно растворяются в крови. Это может приводить к образованию фибриновых нитей в верхней части пробы крови.
|
Занижение PLT.
|
Агрегация PLT.
|
Это связано, как правило, с забором крови или с физиологией данного пациента. Не сдавливайте палец пациента при заборе капиллярной крови и ненакладывайте жгут, либо ослабляйте его сразу же после прокола вены при заборе венозной крови.
|
Занижение RBC, завышение PLT.
|
Лизис RBC.
|
При работе в режиме предилюции следует учитывать, что образование пузырьков при разведении крови с использованием дилютера может приводить к лизису клеток крови и, как следствие, являться причиной завышения результатов подсчета тромбоцитов. Поэтому необходимо следить, чтобы жидкость стекала по стенке стаканчика без образования пузырьков.
|
Занижение RBC, завышение MPVи PLT.
|
Разбухание и лизис RBC.
|
Старая кровь. Необходимо использовать пластиковые одноразовые пробирки, обработанные ЭДТА. Измерить пробу в течение 8 часов для цельной крови, 1 – 2 часов для разведенной крови.
|
Частые засоры, плохая воспроизводимость HGB.
|
Посторонние частицы в пробе.
|
Для дезинфекции подушечки пальца перед забором крови и высушивания носика пробирки следует использовать специальныебезворсовые салфетки. Помните, что применение ватных тампонов и других волокнистых материалов подобного рода приводит к засорению волокнами датчика подсчета клеток и гемоглобиновой камеры (для этого достаточно даже одного волокна!). В результате точность и воспроизводимость измерения концентрации HGB резко падает. Извлечение посторонних частиц из камеры требует повышенного расхода промывающего раствора, а в ряде случаев, даже частичной разборки прибора.
|
Занижение RBC, частые засоры.
|
Плохо перемешена проба.
|
Цельная кровь имеет высокую вязкость и поэтому трудно перемешивается. Перед началом измерения цельную кровь следует перемешивать плавным переворачиванием и вращением пробирки втечение не менее 2 минут. Для этих целей лучше всего использовать специальный гематологический шейкер.
При ручном перемешивании цельной крови недопустимы резкие встряхивающие движения, так как они приводят к механическому лизису эритроцитов.
|
Низкая воспроизводимость.
|
Грязная апертура
|
У прибора отсутствует автоматическая промывка после каждой пробы.
|
Микросгустки в пробе
|
Это, как правило, связано с пробоподготовкой (качеством ЭДТА или перемешиванием).
|
Плохая WBC формула.
|
Старая кровь.
|
Для хорошей дифференциации лейкоцитов необходимо провести измерение в течение 2 – 3 часов для цельной крови и 5 – 30 минут для разведенной.
|
Несоответствие реагентов прибору, просроченные реагенты.
|
Во избежание случаев несовместимости реагентов следует использовать изотонический и лизирующий растворы от одного изготовителя и сертифицированные для данного прибора. При смене реагентов одного производителя на реагенты другого производителя обязательно консультируйтесь с инженерно-сервисной службой.
|
Неправильный объем и/или время лизирования (для полуавтоматов).
|
Желательно использовать лизирующий раствор, расфасованный в капельницы, для удобства дозирования. Для большинства приборов нужно 2 – 4 капли на одну пробу. Оптимальное время лизирования 20 – 60 секунд.
|
Физиология данного пациента.
|
По статистике: венозная кровь, оптимальный вариант - из 100 здоровых пациентов у ~5 прибор не дает формулу или показывает патологию;
Цельная капиллярная кровь – у ~10;
Разведенная капиллярная – у ~20.
|
Плохая точность при высоких значениях WBCи PLT.
|
Значения анализа выходят за пределы границ линейности прибора.
|
Необходимо разведение пробы и пересчет ее с учетом коэффициента разведения. Оптимально, когда прибор имеет возможность автоматического разведения и пересчета патологической пробы.
|
Большой объем забора крови.
|
Зависит от конструкции данного прибора, метода дозирования (шприцом или поворотным клапаном).
|
Не принципиально, сколько забирает прибор - 20, 32, 50, 10, 12 или 9.8 мкл. Это коммерческая уловка, необоснованная реклама. Для правильного подсчета пробы мы должны соблюдать соотношение разведения крови и ЭДТА, так при работе с капиллярной кровью и микроветами мы должны взять у пациента200 мкл крови, и не принципиально, сколько от туда возьмет прибор. Для улучшения воспроизводимости соотношения проба/изотоник, а соответственно и точности анализа, даже лучше, когда прибор забирает больше крови. Для неонатальных проб (в родильных домах) важна минимизация забора крови упациента, а не прибором из пробирки, в таких случаях нужна возможность работы с предилюцией (20 мкл крови от пациента – пипетка Сали, капилляр «End-to-end»), что обеспечивает не каждый прибор.
|